本试剂盒通过利用离心吸附柱技术和特有的的裂解缓冲体系，可安全、快速、高效的提取多种简单植物组织基因组DNA。植物样本经液氮完全研磨后与裂解液充分混合，能够快速释放基因组DNA，提取操作仅在1小时内完成。本试剂盒可从50-100 mg的植物组织中提取纯化得到1-10 µg的高纯度基因组DNA，提取的基因组DNA可用于PCR扩增、酶切反应、Southern杂交以及RAPD、AFLP、RFLP等多种常规分子生物学实验。

      RNase A冰袋（wet ice）运输，-20℃保存；其余试剂常温运输，常温储存；有效期12个月。

1. 超低温冻存的植物样本避免反复冻融，否则会导致提取的DNA质量与产量下降。

2. Buffer PGL1如有沉淀出现，使用前请于65℃加热，直至沉淀消失，混匀即可使用。

3. 使用前请向Buffer PD和Buffer PW中加入指定量（见瓶身）的无水乙醇。

1. 植物组织样本裂解：

      a. （推荐）取新鲜或超低温冻存的植物组织50-100 mg，迅速转移到装有2-3颗3 mm的研磨珠（推荐ABC0221-150G）并用液氮预冷的2.0 mL RNase-Free研磨管（推荐ABC-200-M）中，将研磨管置于研磨仪（推荐ABC901001）上（放置研磨管前将适配器于液氮中迅速预冷）进行研磨，直至研磨成粉末状（如果没有完全研磨成粉末状，会影响DNA得量和质量）。然后加入400 μL Buffer PGL1和6 μL RNase A，使用移液器吹打至裂解液中无明显沉淀，室温静置10 min。

      b. 取新鲜或超低温冻存的植物组织50-100 mg，迅速转移到用液氮预冷的1.5 mL RNase-free离心管中，加入液氮，用研杵研磨组织，其间不断加入液氮，直至样本研磨成粉末状（如果样本没有完全研磨成粉末状，会影响DNA得量和质量）。然后加入400 μL Buffer PGL1和6 μL RNase A，使用移液器吹打至裂解液中无明显沉淀，室温静置10 min。

      c. 取新鲜或超低温冻存的植物组织50-100 mg，迅速转移到用液氮预冷的研钵中，加入液氮，用研杵研磨组织，其间不断加入液氮，直至研磨成粉末状（如果没有完全研磨成粉末状，会影响DNA得量和质量），将研磨成粉末状的样本加入到含有400 μL Buffer PGL1和6 μL RNase A的1.5 mL RNase-free离心管中，使用移液器吹打至裂解液中无明显沉淀，室温静置10 min。

2. 向离心管中加入130 μL Buffer PGL2，使用移液枪吹打混匀，冰上放置5 min；

3. 12,000 rpm离心5 min，将上清转移至一新的离心管中；

4. 向离心管中加入与上清液等体积的Buffer PD，上下颠倒混匀；

5. 将DNA Spin Column安置于Collection Tube上，并将上述混合液转移至DNA Spin Column中。每次加入量不超过600 µL，如果超过600 µL可分批加入；

6. 12,000 rpm离心30 s，弃掉滤液。将DNA Spin Column重新放回Collection Tube中；

7. 向DNA Spin Column中加入600 μL Buffer PW（请沿管壁加入Buffer PW，有助于冲洗管壁上残留的盐分）12,000 rpm离心30 s，弃掉废液；

8. 重复操作步骤7；

9. 将DNA Spin Column放入Collection Tube中，12,000 rpm离心2 min；

10. 将DNA Spin Column置于一新的1.5 mL的离心管中，室温放置3-5 min，使DNA Spin Column残留的乙醇完全挥发；

11. 向DNA Spin Column的膜中央加入50-100 μL Buffer TE或Nuclease-free Water，室温放置5 min（将Buffer TE或Nuclease-free Water加热至65℃有利于提高洗脱效率）；

12. 12,000 rpm离心2 min，收集DNA。若要得到更高浓度的DNA，也可以将第一次的洗脱液重新加回至DNA Spin Column中，室温静置5 min，12,000 rpm离心2 min，再次收集DNA。

1. 尽量使用新鲜植物组织，以确保基因组DNA的得率与完整性。

2. 提取的DNA若要长期保存，请用Buffer TE洗脱，并于-80℃保存。

3. 得到的基因组DNA避免多次反复冻融。

本试剂盒对多种植物样本基因组DNA提取量见下表，基因组DNA的提取量和植物种类、部位以及生长状态有关，样本推荐用量如下表。